Test-Ausrüstung Furaltadone (AMOZ) ELISA für Entdeckungs-Honig Garnele/Fleisch/Hepar

Furaltadone (AMOZ) ELISA Test Kit

Produkt-Beschreibung

REAGEN-^{™Furaltadone} (AMOZ) ELISA Test Kit stellt einen wettbewerbsfähigen Enzym Immunoassay für die quantitative Analyse von furaltadone in den Fischen, Garnele, Fleisch (Huhn, Rindfleisch, Schweinefleisch und hepar), Eier, Schleifstein zur Verfügung.

• Schnelle (4 Stunden), hohe Wiederaufnahme (80 - 105%) und kosteneffektive Extraktionsmethoden für verschiedene Proben.

• Hohe Empfindlichkeit (0,05 ng/g oder ppb) und niedrige Nachweisgrenze (0,1 ng/g oder ppb) für verschiedene Proben.

• Hohe Reproduzierbarkeit.

• Eine schnelle ELISA-Probe (weniger als 1 Stunden unabhängig davon Zahl von Proben).

Verfahrens-Überblick

Die Methode basiert auf einer wettbewerbsfähigen kolorimetrischen ELISA-Probe. Das AMOZ-BSA ist in den Plattenbrunnen beschichtet worden. Während der Analyse werden Probe und der AMOZ-Antikörper zusammen mit dem Sekundärantikörper hinzugefügt, etikettiert mit einem Peroxydaseenzym. Wenn der AMOZ-Rückstand in der Probe anwesend ist, konkurriert er für den AMOZ-Antikörper, dadurch er verhindert er den Antikörper an der Schwergängigkeit zum AMOZ-BSA befestigt zum Brunnen. Die resultierende Farbintensität, nach Zusatz des HRP-Substrates (TMB), hat ein umgekehrtes Verhältnis zur AMOZ-Rückstandkonzentration in der Probe.

Kit Contents, Lagerung und Haltbarkeitsdauer

REAGEN-^{™Furaltadone} (AMOZ) ELISA Test Kit hat die Kapazität für 96 Bestimmungen oder die Prüfung von 42 Proben in doppelter Ausführung (12 Brunnen für Standards annehmend). Bringen Sie alle unbenutzten microwells zur Folientasche zurück und versiegeln Sie sie mit dem Trockenmittel wieder, das im ursprünglichen Paket bereitgestellt wird. Speichern Sie die Ausrüstung an 2-8°C*. Die Haltbarkeitsdauer ist 12 Monate, als die Ausrüstung richtig gespeichert wird.

* wenn Sie nicht planen, die Ausrüstung für über 1 Monat, Speicher Antibody#1 und HRP-konjugierten Antikörper #2 an -20°C oder in einem Gefrierschrank zu benutzen.

Empfindlichkeit (Nachweisgrenze)

Besonderheit (Kreuzreaktivität)

Erforderliche Materialien versehen nicht mit der Ausrüstung

Leser der Platte 1.Microtiter (450 Nanometer)

2.Incubator

Mischer 3.Tissue (z.B. Homogenisierer Omni TissueMaster)

Gas des Verdampfers 4.Rotary oder des Stickstoffes

Mischer 5.Vortex (z.B. Gneie-Turbulenzmischer von VWR)

6,10, 20, 100 und 1000 ml-Pipetten

Pipette 7.Multi-channel: 50-300 ml (optional)

Azetat 8.Ethyl

9.0.1 M K2HPO4

10.n-Hexane (oder Nheptan)

11.1M NaOH

12.1M HCL

Warnungen und Vorkehrungen

• Die Standards enthalten Furaltadone. Griff mit bestimmter Sorgfalt.

• Benutzen Sie nicht die Ausrüstung hinter dem Verfallsdatum.

• Vermischen Sie Reagenzien von den verschiedenen Ausrüstungen oder Lose nicht außer Komponenten mit der gleichen Teilnummer innerhalb ihrer Verfalldaten. ANTIKÖRPER UND PLATTEN SIND AUSRÜSTUNG UND LOT-SPECIFIC.

• Versuchen Sie, eine Labortemperatur von 20°-25°C (68°-77°F) beizubehalten. Avoid Betrieb prüft unter oder nahe Belüftungsöffnungen, da dieser möglicherweise das übermäßiges Abkühlen, Heizung und/oder Verdampfung verursacht. Auch lassen Sie nicht Proben im direkten Sonnenlicht laufen, wie dieses möglicherweise übermäßige Hitze und Verdampfung verursacht. Kalte Bankspitzen sollten vermieden werden, indem man Tuch einiger Papierschichten oder etwas Anderes Isoliermaterial unter den Probenplatten während der Ausbrütung setzt.

• Vergewissern Sie sich, dass Sie mit nur oder entionisiertes Wasser destillieren, da Wasserqualität sehr wichtig ist.

• Wenn Sie Proben oder Reagenzien in eine leere Mikrotiterplatte pipettieren, legen Sie die Pipettenspitzen in die untere Ecke des Brunnens und Kontakt mit dem Plastik aufnehmen.

• zeit Ausbrütungen von Probenplatten sollten so genau festgesetzt werden, wie möglich. Seien Sie konsequent, wenn Sie Standards der Probenplatte hinzufügen. Addieren Sie Ihre Standards zuerst und dann Ihre Proben.

• Addieren Sie Standards, um nur im Auftrag von der niedrigen Konzentration zur hohen Konzentration zu überziehen, da dieses das Risiko des Kompromittierens der Standardkurve herabsetzt.

• Kühlen Sie immer Platten in Siegeltaschen mit einem Trockenmittel, um Stabilität beizubehalten. Verhindern Sie Kondensation an der Formung auf Platten, indem Sie sie zur Raumtemperatur abgleichen lassen (20 – 25°C/68 – 77°F) während im Verpacken.

PROBENAUFBEREITUNG

Seien Sie sicher, dass Proben richtig gespeichert werden. Im allgemeinen sollten Proben am forno 2-4°C gekühlt werden mehr als 1-2 Tage. Frostproben zu einem Minimum -20°C, wenn sie während eines längeren Zeitraums gespeichert werden müssen. Gefrorene Proben können an Raum Temps (20 – 25°C/68 – 77°F) oder in einem Kühlschrank vor Gebrauch aufgetaut werden.

Fische

• Mischung 1 g der homogenisierten Probe mit 0,5 ml Extraktions-Puffers des Beispiel1x, 3,5 ml destilliertem Wasser, 0,5 ml von 1 M HCl und 20 ml von 50 Millimeter 2-Nitrobenzaldehyde durch das Vortexing für 30 Sekunden.

• Brüten Sie an 50°C -55°C 3 Stunden lang aus. Turbulenz die Probe für 5 Sekunden jede Stunde während der Ausbrütung.

• Addieren Sie 5 ml von 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml 1 m-NaOH und 6 ml Ethylacetat, Turbulenz für 2 Minuten.

• Zentrifuge bei 4.000 x g für 5 Minuten bei Zimmertemperatur (20 – 25°C).

• Übertragung 3 ml des Ethylacetats schwimmend (entsprechend 0,5 g der Stammprobe) in eine neue Phiole (F vermeiden die niedrigere wässrige Schicht! Wenn Sie mit Grundanstrich verseucht werden, zentrifugieren Sie das extrahierte Ethylacetat für 5 Minuten bei 4.000 x g wieder und erhalten Sie die obere organische Schicht). Falls Emulsion geschah und die obere Ethylacetatschicht kleiner als 3 ml war, brüten Sie die Probe im Wasserbad für 3 Minuten an 85°C.Use ein Rotationsverdampfer aus, um die Probe in einem Wasserbad 60-70°C bei vermindertem Druck zu trocknen. Wechselweise kann die Probe durch den Schlag des Stickstoffgases in einem Wasserbad 60-70°C getrocknet werden.

• Lösen Sie den getrockneten Rückstand in 1 ml des N-Hexans auf (oder des Nheptans).

• Fügen Sie 1 ml von 1x-Beispielextraktions-Puffer, Turbulenz die Probe für 2 Minuten hinzu.

• Zentrifugieren Sie die Probe bei 4.000 x g für 10 Minuten bei Zimmertemperatur (20 – 25°C/68 – 77°F).

• Verwenden Sie 50mL der niedrigeren wässrigen Schicht pro Brunnen für die Probe.

Anmerkung: Verdünnungsfaktor: 2. Um hohen Hintergrund zu vermeiden, wird es dass eine lösliche Blindprobe parallel vorbereitet wird, beginnend mit der Reduzierung von 3 ml Ethylacetat trocken empfohlen und fortfährt mit dem Restextraktionsverfahren. Subtrahieren Sie das Ergebnis der löslichen Steuerung von den Beispielergebnissen.

Garnele /Meat/Hepar

• Mischung 1 g der homogenisierten Probe mit Extraktions-Puffer 0,5 ml 1X Beispiel, 3,5 ml destilliertem Wasser, 0,5 ml von 1 M HCl und 20 ml von 50 Millimeter 2-Nitrobenzaldehyde durch das Vortexing für 30 Sekunden.

• Brüten Sie at50°C -55°C 3 Stunden lang aus. Turbulenz die Probe für 5 Sekunden jede Stunde während der Ausbrütung.

• Addieren Sie 5 ml von 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml 1 m-NaOH und 6 ml Ethylacetat, Turbulenz für 5 Minuten.

• Zentrifuge bei 4.000 x g für 5 Minuten bei Zimmertemperatur (20 – 25°C/68 – 77°F).

• Übertragung 3,0 ml des Ethylacetats schwimmend (entsprechend 0,5 g der ursprünglichen Eiprobe) in eine neue Phiole (F vermeiden die niedrigere wässrige Schicht! Wenn Sie mit Grundanstrich verseucht werden, zentrifugieren Sie das extrahierte Ethylacetat für 5 Minuten bei 4.000 x g wieder und erhalten Sie die obere organische Schicht). Benutzen Sie einen Rotationsverdampfer, um die Probe in einem Wasserbad 60-70°C bei vermindertem Druck zu trocknen. Wechselweise kann die Probe durch den Schlag des Stickstoffgases in einem Wasserbad 60-70°C getrocknet werden.

• Lösen Sie den getrockneten Rückstand in 1 ml des N-Hexans auf (oder des Nheptans).

• Addieren Sie 1 ml Extraktionspuffer und -turbulenz des Beispiel1x die Probe für 2 Minuten.

• Zentrifugieren Sie die Probe bei 4.000 x g für 10 Minuten bei Zimmertemperatur (20 – 25°C/68 – 77°F).

• Verwenden Sie 50 ml der niedrigeren wässrigen Schicht pro Brunnen für die Probe.

Anmerkung: Verdünnungsfaktor: 2. Um hohen Hintergrund zu vermeiden, wird es dass eine lösliche Blindprobe parallel vorbereitet wird, beginnend mit der Reduzierung von 3 ml Ethylacetat trocken empfohlen und fortfährt mit dem Restverfahren. Subtrahieren Sie das Ergebnis der löslichen Steuerung von den Beispielergebnissen.

Ei

• Mischung 1 g der Eiprobe mit 0,5 ml Extraktions-Puffers des Beispiel1x, 3,5 ml destilliertem Wasser, 0,5 ml von 1 M HCl und 20 ml von 50 Millimeter 2-Nitrobenzaldehyde durch das Vortexing für 2 Minuten.

• Brüten Sie an 50°C -55°C 3 Stunden lang aus. Turbulenz die Probe für 5 Sekunden jede Stunde während der Ausbrütung.

• Fügen Sie 5mL von 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml 1 m-NaOH und 6 ml vom Ethylacetat, Turbulenz 5 Minuten mit Höchstgeschwindigkeit hinzu.

• Zentrifuge bei 4.000 x g für 10 Minuten bei Zimmertemperatur (20 – 25°C/68 – 77°F).

• Übertragung 3,0 ml des Ethylacetats schwimmend (entsprechend 0,5 g der ursprünglichen Honigprobe) in eine neue Phiole (F vermeiden die niedrigere wässrige Schicht! Wenn Sie mit Grundanstrich verseucht werden, zentrifugieren Sie das extrahierte Ethylacetat für 5 Minuten bei 4.000 x g wieder und erhalten Sie die obere organische Schicht). Benutzen Sie einen Rotationsverdampfer, um die Probe in einem Wasserbad 60-70°C bei vermindertem Druck zu trocknen. Wechselweise kann die Probe durch den Schlag des Stickstoffgases in einem Wasserbad 60-70°C getrocknet werden.

• Lösen Sie den getrockneten Rückstand in 1 ml des N-Hexans auf (oder des Nheptans).

• Fügen Sie 1 ml von 1x-Beispielextraktionspuffer und -turbulenz für 2 Minuten hinzu.

• Zentrifugieren Sie die Probe bei 4.000 x g für 10 Minuten bei Zimmertemperatur (20 – 25°C/68 – 77°F).

• Use50 ml der niedrigeren wässrigen Schicht für die Probe.

Anmerkung: Verdünnungsfaktor: 2. (1), nachdem Verdampfung des Ethylacetatauszuges, der resultierende Rückstand nicht vollständig aufgelöst ist. Jedoch wird die Wiederfindungsrate nicht kompromittiert (>80%). (2) für diese Vorbereitung, empfehlen uns wir, Standard 0,5 ng/g oder ppb als der abgeschnittene Wert für positive Proben zu verwenden, da negative Proben beträchtliche Hintergrundeffekte zeigen konnten (in einigen Fällen zwischen Standards 0,05 ng/g und 0,15 ng/g).